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    炭疽桿菌pagA cap rpoB基因檢測試劑盒(三重熒光PCR)

    更新日期: 2022-04-23
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    炭疽桿菌pagA cap rpoB基因檢測試劑盒(三重熒光PCR)

    【產品名稱】

    通用名稱:炭疽桿菌 pagA、cap、rpoB 基因(BaP/C/R)檢測試劑盒(三重熒光 PCR 法) Name:Bacillus Anthracis pagA、cap、rpoB gene Detection Kit (Real-Time PCR Method)

    【包裝規格】

    50T/盒

    【預期用途】

    炭疽是由炭疽桿菌(Bacillus Anthracis, BA)感染引起的一種人獸共患病。BA 在環境中形成芽孢,可長期、穩定地存在于自然界中。由于 BA 的穩定性及其致病性,易引發突發公共衛生事件。目前的 BA 檢測方法主要基于病原體的培養、染色鏡檢、血清學檢測等,但這些方法均不適合早期的快速偵檢。基于核酸檢測的熒光-PCR       技術,因其靈敏度高、操作簡單、特異性好,可快速檢測炭疽病原,及時控制炭疽疫情。

    本試劑盒采用探針法實時熒光定量 PCR 技術,用于水皰內容物、病灶滲出物、分泌物、痰液、嘔吐物、糞便、血液、腦脊液以及增菌液中炭疽桿菌的定性檢測。

    【檢驗原理】

    本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,對炭疽桿菌的 pagA、cap、rpoB 的基因分別設計特異性引物和特異性探針,用熒光 PCR 技術對炭疽桿菌的 DNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

    【試劑組成】

    包裝規格

    50T/盒

    BaP/C/R 反應液

    500μL×2 管

    酶液

    50μL×1 管

    BaP/C/R 陽性質控品

    50μL ×1 管

    陰性質控品

    250μL ×1 管

    說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

    【儲存條件及有效期】

    -20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

    【適用儀器】

    ABI、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

    【標本采集】

    炭疽水皰內容物、炭疽病灶滲出物、分泌物、痰液、嘔吐物、糞便、血液、腦脊液等;

    【保存和運輸】

    上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。

    【使用方法】

    1.  樣品處理(樣本處理區)

    1.1  樣本前處理

    組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 200μL 于 1.5mL滅菌離心管中;咽拭子樣品直接取 200μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

    1.2  核酸提取

    推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提取,請按照試劑說明書進行操作。

    2.  試劑配制(試劑準備區)

    根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性質控品+1 管陽性質控品),每測試反應體系配制如下表:

    試劑

    BaP/C/R 反應液

    酶液

    用量(樣本數為 N)

    20μL

    1μL

    將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21μL/管。

    3.  加樣(樣本處理區)

    將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。

    4.  PCR 擴增(核酸擴增區)


    4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

    4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;

    熒光通道選擇:檢測通道(Reporter Dye)FAM,Cy5,TXR, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

    4.3 推薦循環參數設置:

    步驟

    循環數

    溫度

    時間

    收集熒光信號

    1

    1 cycle

    95℃

    10min

    2

    40 cycles

    94℃

    15sec

    55℃

    30sec

    5.  結果分析判定

    5.1  結果分析條件設定

    設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節Baseline 的start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的Value值(上下拖動閾值線至高于陰性質控品),重新分析結果。

    5.2  結果判斷

    FAM 通道為 pagA 基因檢測結果,Cy5 通道為 cap 基因檢測結果,TXR 通道為 rpoB 檢測結果; 陽性:檢測通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數增長曲線;

    可疑:檢測通道 35<Ct 值≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性;

    陰性:樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

    6.  質控標準

    陰性質控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示;

    陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

    7.  檢測方法的局限性

    1. 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

    2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

    3. 陽性質控品、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

    4. 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

    5. 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

    6. 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

    7. 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

    【注意事項】

    1. 所有操作嚴格按照說明書進行;

    2. 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心;

    3. 反應液應避光保存;

    4. 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

    5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;

    6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

    7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

    8. 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。

    【生產企業】

    企業名稱:上海晅科生物科技有限公司


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